考马斯亮蓝染色液 1000 mL：
先称取考马斯亮蓝R250 1.0 g 于1000 mL试剂瓶内，加入甲醇450mL溶解，再加冰醋酸100 mL和双蒸水450 mL至大约1000 mL。室温可放置12个月以上。染色液可倒入专用的回收试剂瓶，届时加入适量甲醇、考马斯亮蓝和大约10 g/L的三氯乙酸后可重复使用。
考马斯亮蓝脱色液 10 L：
于10 L洁净塑料桶内装入工业乙醇2 L，冰醋酸500 mL，加入去离子水至10 L，混匀，室温可放置12个月以上。
蛋白电泳凝胶的快速染色和脱色：
凝胶的染色和脱色于合适体积的塑料盒中进行。电泳后的凝胶加入染色液（以刚没过凝胶即可），于微波炉加热约40-70 sec至染色液刚刚沸腾（注意塑料盒的盖子不要盖的太紧以防染色液爆沸出），然后于脱色摇床上继续染色约10 min即可。染色液请倒入专用的回收容器内。以自来水小心地淋洗凝胶冲去剩余染料，然后倒入适量的脱色液，微波加热至刚沸腾后于染色摇床上摇动约10 min，倒掉脱色液，此时凝胶的蛋白条带即可看清。重复以上脱色步骤一次，即可看清电泳条带。扫描凝胶蛋白条带需要完全脱掉背景颜色，这需要重新换上脱色液室温摇床脱色2 h以上。
蛋白上样量的选择
要根据具体情况决定，对于考马斯亮蓝染色，如果样品为菌体蛋白样品，有至少50条以上的条带要显出来，需要上样量在15 μg左右即可，如果蛋白条带少于6条，如蛋白Marker或纯化阶段后期的蛋白样品，上样量可减少至2 μg即可显出清晰的条带。【简化成大肠杆菌上样，大约等于5.0个OD600上样10-15 uL左右】
